PCR產(chǎn)物的檢測方法：

瓊脂糖凝膠電泳

這是實驗室最chang用的方法，簡便易行，只需少量DNA即可進行實驗。其原理是不同大小的DNA分子通過瓊脂糖凝膠時，由于泳動速度不同而被分離，經(jīng)溴化乙錠（EB）染色，在紫外光照射下DNA分子發(fā)出熒光而判定其分子的大小。

用于電泳檢測PCR產(chǎn)物的瓊脂糖濃度常為1%—2%，應(yīng)該使用純度高的電泳純級瓊脂糖，這種瓊脂糖已除去了熒光抑制劑及核酸酶等雜質(zhì)。

（1）制膠

瓊脂糖凝膠厚度約為3~5mm。過薄則加樣孔樣品會溢出來，過厚觀察時熒光穿透不強以至有些小片段DNA帶型不易分辨。如配制2%凝膠100ml，稱取瓊脂糖2g于三角瓶中，加入100ml 0.5×TBE液，微波爐加熱2-5min，使瓊脂糖wan全溶解（注意不要暴沸），置室溫等溫度下降至60℃時，加入終濃度0.5μg/ml的EB液，充分混勻后倒板（注意排除氣體）。

（2）加樣和電泳

上樣時一般取PCR反應(yīng)液5~10μl，加入3μl溴酚蘭液，充分混勻，加入凝膠加樣孔中。電泳儀可用一般穩(wěn)壓可調(diào)中壓電泳儀，電泳工作液為0.5×TBE液，接通電源，使樣品由負(fù)極向正極移動。60-100V恒壓電泳約30-60分鐘。

（3）檢測

將凝膠板放在紫外透射儀的石英玻璃臺上進行檢測，DNA產(chǎn)物與熒光染料EB形成橙黃色熒光復(fù)合物。觀察各泳道是否有橙黃色熒光帶出現(xiàn)，并與擴增時所設(shè)的陽性對照比較，判斷陽性或陰性結(jié)果。也可在電泳時以標(biāo)準(zhǔn)分子量作對照，判斷其擴增片段是否與設(shè)計的大小相一致。

聚丙烯酰胺凝膠電泳

聚丙烯酰胺凝膠電泳比瓊脂糖凝膠電泳繁瑣，但在引物純化、PCR擴增指紋圖、多重PCR擴增、PCR擴增產(chǎn)物的酶切限制性長度多態(tài)性分析時常用到。

聚丙烯酰胺凝膠電泳分辨DNA片段的有效范圍：

(1)制膠

在兩塊制膠玻璃板中間放上墊片，放上制膠架，擰緊制膠螺絲夾緊玻璃板。

制備適量合適濃度的凝膠，使之略多于膠板。

不同濃度（%）聚丙酰胺凝膠的制法：

在加入TEMED和10%過硫酸銨后，立即混勻，倒入放置45℃角的玻璃板內(nèi)，wan全注滿（注意不要有氣泡），迅速將玻璃板放置水平位置。立即放成型梳子于腔頂并夾緊，待30-60分鐘膠聚合后，取下膠板，放入電泳槽中固定。

（2）加樣和電泳

上下槽中加入1×TBE電泳緩沖液，溢過加樣孔，拔出梳子，排出加樣孔中的氣泡，將PCR產(chǎn)物或限制性內(nèi)切酶消化產(chǎn)物2與1上樣緩沖液混勻，用微量注射器加入加樣孔底部，使樣品在孔底成一層，兩側(cè)孔中加入標(biāo)準(zhǔn)分子量的DNA Marker。

以2-10V/cm電壓電泳，電泳時間足夠長，使片斷足以分開，待指示劑走到適宜位置時關(guān)閉電源，將膠片取出。

（3）銀染

分開兩塊玻璃板，將凝膠片放入100ml銀染固定液中振蕩15min，雙蒸水洗3次，每次2min，然后將凝膠片轉(zhuǎn)入100ml 0.2%的AgNO3中于搖床上染色約10min，吸去AgNO3液，用雙蒸水洗3次，每次30s，加入100ml顯色液約7-10min，待DNA帶顯示清除時，吸去顯色液，加入固定液Na2CO3，靜置2-3min，取出凝膠觀察。